東京大学大学院医学系研究科・医学部・微生物学
微生物学教室
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東京大学大学院医学系研究科・医学部・微生物学
微生物学教室

研究業績

* 責任著者

2024年

  1. Tahara M, Okura T, Sato M, Takeda M*. Optical control of mononegavirus gene expression and replication. MIMB. in press（モノネガウイルスの遺伝子発現と複製の光制御）Link


2023年

  1. Shirato K*, Suwa R, Nao N, Kawase M, Sugimoto S, Kume Y, Chishiki M, Ono T, Okabe H, Norito S, Hosoya M, Takeda M, Hashimoto K. Molecular epidemiology of human metapneumovirus before after COVID-19 in East Japan in 2017-2-22. Jpn J Infect Dis. in press（2017-2022年の東日本におけるCOVID-19前後のヒトメタニューモウイルスの分子疫学）
  2. Takeda M*. Cleavage activation of respiratory viruses – Half a century of history from Sendai virus to SARS-CoV-2. Jpn J Infect Dis. in press（呼吸器ウイルスの開裂活性化－センダイウイルスからSARS-CoV-2まで半世紀の歴史）Link
  3. Shimazaki N*, Kuwahara T, Nishijima H, Nakamura K, Sato K, Murano K, Itamura S, Akahori Y, Takashita E, Kishida N, Arita T, Nakauchi M, Takeda M, Hasegawa H, Ryo A, Harada Y. Establishment of reference reagents for single-radial-immunodiffusion assay on the 2022/23 seasonal influenza vaccine in Japan and their quality validation. Jpn J Infect Dis. in press（日本における2022/23シーズンインフルエンザワクチンの単回免疫拡散法標準試薬の確立と品質バリデーション）Link
  4. Takashita E, Fujisaki S, Morita H, Nagata S, Miura H, Nagashima M, Watanabe S, Takeda M, Kawaoka Y, Hasegawa H. SARS-CoV-2 Omicron variants show a lower propensity to acquire resistance to RNA-dependent RNA polymerase inhibitors and 3C-like protease inhibitors than Delta variants. Antiviral Res.（SARS-CoV-2オミクロン変異株は、デルタ変異株と比べて、RNA依存性RNAポリメラーゼ阻害剤や3C様プロテアーゼ阻害剤に対する耐性を獲得しにくい）Link
  5. Fukuhara H, Yumoto K, Sako M, Kajikawa M, Ose T, Kawamura M, Yoda M, Chen S, Ito Y, Takeda S, Mwaba MH, Wang J, Hashiguchi T, Kamishikiryo J, Maita N, Kitatsuji C, Takeda M, Kuroki K, Maenaka K. Glycan-shielded homodimer structure and dynamical features of the canine distemper virus hemagglutinin relevant for viral entry and efficient vaccination. Research Square (preprint) eLife (under review). （イヌジステンパーウイルスの細胞侵入と効率的なワクチン接種効果に関する糖鎖で保護されたヘマグルチニンのホモ二量体構造と動的特徴）Link
  6. Ono T, Hashimoto K*, Kume Y, Chishiki M, Okabe H, Sato M, Norito S, Aso J, Sada M, Mochizuki I, Mashiyama F, Ishibashi N, Suzuki S, Sakuma H, Suwa R, Kawase M, Takeda M, Shirato K, Kimura H, Hosoya M. Molecular diversity of human respiratory syncytial virus before and during the COVID-19 pandemic in two neighboring Japanese cities. Microbiol Spectr e0260622, 2023 （日本の近隣2都市におけるCOVID-19流行前および流行中のRSウイルスの分子的多様性）Link
  7. Takahashi T, Akagawa M, Kimura R, Sada M, Shirai T, Okayama K, Hayashi Y, Kondo M, Takeda M, Ryo A, Kimura H*. Molecular evolutionary analyses of the fusion protein gene in human respirovirus 1. Virus Res 333:199142. （ヒトレスピロウイルス1におけるFタンパク遺伝子の分子進化解析）Link
  8. Matsuzaki Y, Ohmiya S, Ota R, Kitai Y, Watanabe O, Kitaoka S, Kumaki S, Onuma R. Watanabe Y, Nagai Y, Kadowaki Y, Shimotai Y, Nishimura H. Epidemiologic, clinical, and genetic characteristics of influenza C virus infections among outpatients and inpatients in Sendai, Japan from 2006 to 2020. J Clin Virol 162:105429, 2023. （2006年から2020年までの仙台市の外来患者および入院患者におけるインフルエンザCウイルス感染症の疫学的、臨床的、遺伝子学的特徴）Link
  9. Okura T*, Tahara M, Otsuki N, Sato M, Takeuchi K, Takeda M. Generation of a photo controllable recombinant bovine parainfluenza virus type 3. Microbiol Immunol 67:204-209, 2023. （光制御可能な組換えウシパラインフルエンザウイルス3型の作製）Link
  10. Someya K, Okemoto-Nakamura Y, Kurata T, Kanbayashi D, Saito N, Itamochi M, Otsuki N, Hanada K, Takeda M. Establishment of measles virus receptor-expressing Vero cells lacking functional poliovirus receptors. Microbiol Immunol Online ahead of print.（機能的なポリオウイルス受容体を欠く麻疹ウイルス受容体発現Vero細胞の樹立）Link
  11. Miyano S*, Vynnycky E, Pattamavone C, Ichimura Y, Mori Y, Nouanthong P, Phounphenghack K, Tengbriacheu C, Khamphaphongphane B, Franzel L, Yang TU, Raaijimarkers H, Komada K, Ota T, Funato M, Takeda M, Hachiya M. Comparison of population-based measles-rubella immunoglobulin G antibody prevalence between 2014 and 2019 in Lao People's Democratic Republic: Impacts of the national immunization program. Int J Inf Dis 129: 70-77, 2023（ラオス人民民主共和国における2014年から2019年の人口ベースの麻疹・風疹免疫グロブリンG抗体保有率の比較。国家予防接種プログラムの影響）Link
  12. Bae C, Katoh H*, Wakata A, Sakata M, Kato F*, Takeda M. Demonstration of bacterium-free very rapid reverse genetics system using mumps virus. Microbiol Immunol 67:44-47, 2023.（ムンプスウイルスを用いた大腸菌フリーの超高速リバースジェネティクスシステムの実証）Link
  13. 竹田誠　【識者の眼】5類移行後にこそ良質な医療提供が求められる　日本医事新報　5157:58 Link
  14. 竹田誠、加藤大志　麻疹ウイルス、風疹ウイルス、ムンプスウイルス　小児内科　4月増大号　新しい時代の小児感染症　55:641-644, 2023. Link
  15. 北井優貴、竹田誠　RSウイルスとは　臨床とウイルス　51:73-75, 2023. Link
  16. 竹田誠　SARS-CoV-2のウイルス学的特徴　バムサジャーナル　35:26-31. Link
  17. 竹田誠　SARS-CoV-2のウイルス学　周産期医学　53:1405-1409. Link
  18. 關文緒、竹田誠　麻疹　小児内科　増刊号　エキスパートが教える小児の薬物治療　55:280-283. Link
  19. 關文緒、竹田誠　麻疹ウイルス　日常診療に役立つ小児感染症マニュアル2023　編集　日本小児感染症学会. Link
  20. 柿崎正敏、竹田誠　SARS-CoV-2変異株の変遷　臨床とウイルス　51:253-258, 2023. Link


2022年

  1. Liu Y, Katoh H*, Sekizuka T, Bae C, Wakata A, Kato F, Sakata M, Yamaji T, Wang Z, Takeda M. SNARE protein USE1 is involved in the glycosylation and the expression of mumps virus fusion protein and important for viral propagation. PLOS Pathogens 18:e101949, 2022.（SNAREタンパク質USE1は、ムンプスウイルス膜融合タンパク質の糖鎖修飾と発現に関与し、ウイルスの増殖に重要である）Link
  2. Iwata-Yoshikawa N, Kakizaki M, Shiwa-Sudo N, Okura T, Tahara M, Fukushi S, Maeda K, Kawase M, Asanuma H, Tomita Y, Takayama I, Matsuyama S, Shirato K, Suzuki T, Nagata N*, Takeda M*. Essential role of TMPRSS2 in SARS-CoV-2 infection in murine airways. Nat Commun 13: 6100, 2022.（マウス気道でのSARS-CoV-2感染におけるTMPRSS2の重要な役割）Link
  3. Akagawa M, Shirai T, Sada M, Nagasawa N, Kondo M, Takeda M, Nagasawa K, Kimura R, Okayama K, Hayashi Y, Sugai T, Tsugawa T, Ishii H, Kawashima H, Katayama K, Ryo A, Kimura H*. Detailed molecular interactions between respiratory syncytial virus fusion protein and the TLR4/MD-2 complex in silico. Viruses 14:2382, 2022.（RSウイルスFタンパク質とTLR4/MD-2複合体の詳細な分子間相互作用のin silico解析）Link
  4. Mori Y*, Sakata M, Sakai S, Okamoto T, Nakatsu Y, Taguwa S, Otsuki N, Maeda Y, Hanada K, Matsuura Y, Takeda M. Membrane sphingomyelin in host cells is essential for nucleocapsid penetration into the cytoplasm after hemifusion during rubella virus entry. mBio 13:e0169822（風疹ウイルス侵入時のヘミフュージョン後の細胞質へのヌクレオキャプシドの侵入には、宿主細胞膜のスフィンゴミエリンが必要である）Link
  5. Seki F*, Takeda M. Novel and classical morbilliviruses: Current knowledge of three divergent morbillivirus groups. Microbiol Immunol (in press)（新しいモルビリウイルスと古典的モルビリウイルス：3つのモルビリウイルスグループに関する現在の知見）Link
  6. Kidokoro M*, Yamaguchi T, Nariai E, Kodama H, Nakata K, Sano T, Gotou K, Kisu T, Maruyama T, Kuba Y, Sakata W, Higashi T, Kiyota N, Sakai T, Yahiro S, Nagita A, Watanabe K, Hirokawa C, Hamabata H, Fujii Y, Yamamoto M, Yokoi H, Sakamoto M, Saito H, Shibata C, Inada M, Fujitani M, Minagawa H, Ito M, Shima A, Murano K, Katoh H, Kato F, Takeda M, Suga S. Nationwide and long-term molecular epidemiologic studies of mumps viruses that circulated in Japan between 1986-2017. Front Microbiol (in press)（1986年から2017年にかけて日本で流行したムンプスウイルスの全国的かつ長期的な分子疫学的研究）
  7. Wakata A*, Katoh H, Kato F, Takeda M. Nucleolar protein Treacle is important for the efficient growth of mumps virus. J Virol 96:e0072222（核小体タンパク質Treacleは、ムンプスウイルスの効率的な増殖に重要である）Link
  8. Suwa R, Kume Y, Kawase M, Chishiki M, Ono T, Norito S, Sato K, Okamoto M, Kumaki S, Nagai Y, Hosoya M, Takeda M, Nishimura H, Hashimoto K, Shirato K*. Practical validation of United States Centers for Disease Control and Prevention assays for the detection of human respiratory syncytial virus in Pediatric Inpatients in Japan. Pathogens 11:754, 2022.（日本の小児入院患者におけるRSウイルス検出のための米国疾病対策予防センター法の実用的検証）
  9. Okura T, Shirato K, Kakizaki M, Sugimoto S, Matsuyama S, Tanaka T, Kume Y, Chishiki M, Ono T, Moriishi K, Sonoyama M, Hosoya M, Hashimoto K, Maenaka K, Takeda M*: Hydrophobic Alpha-Helical Short Peptides in Overlapping Reading Frames of the Coronavirus Genome. Pathogens 11:877, 2022.（コロナウイルスゲノムの重複読み枠に存在する疎水性αヘリックス型ペプチド）Link
  10. Kanai M, Kamiya H*, Okuno H, Sunagawa T, Tanaka-Taya K, Matsui T, Oishi K, Kitajima H, Takeda M, Mori Y: Epidemiology of congenital rubella syndrome related to the 2012-2013 rubella epidemic in Japan. J Pediatric Infect Dis Sco doi: 10.1093/jpids/piac043. Online ahead of print.（2012-2013年の日本における風疹流行に関連した先天性風疹症候群の疫学について）
  11. Egawa K, Kakizaki M, Kume Y, Suwa R, Kawase M, Ono T, Chishiki M, Okabe H, Norito S, Sato M, Sakuma H, Suzuki S, Hosoya M, Takeda M, Hashimoto K, Shirato K*: Nearly complete genome sequences of 12 types of human rhinoviruses isolated from pediatric inpatients in Fukushima, Japan. Microbiol Resour Announc 13:e0052922, 2022.（福島県内の小児科入院患者から分離されたヒトライノウイルス12株のほぼ完全なゲノム配列の解析）
  12. Sugimoto S, Kume Y, Suwa R, Kawase M, Kakizaki M, Egawa K, Ono T, Chishiki M, Okabe H, Norito S, Sato M, Sakuma H, Suzuki S, Hosoya M, Takeda M, Hashimoto K, Shirato K*: Ten Nearly Complete Genome Sequences of Human Orthorubulavirus 4 Isolated from Pediatric Inpatients in Fukushima, Japan. Microbiol Resour Announc 9:e0041122, 2022.（福島県内の小児科入院患者から分離されたヒトオルソブラウイルス4型（ヒトパラインフルエンザウイルス4型）10株のほぼ完全なゲノム配列について）
  13. Saso W, Yamasaki M, Nakakita S, Fukushi S, Tsuchimoto K, Watanabe N, Sriwilaijaroen N, Kanie O, Muramatsu M, Takahashi Y, Matano T, Takeda M, Suzuki Y*, Watashi K*: Significant role of host sialylated glycans in the infection and spread of severe acute respiratory syndrome coronavirus 2. PLOS Pathog 18:e1010590, 2022.（重症急性呼吸器症候群コロナウイルス2型の感染・拡大における宿主のシアリル化糖鎖の重要な役割について）Link
  14. Kume Y, Hashimoto K*, Chishiki M, Norito S, Suwa R, Ono T, Mochizuki I, Mashiyama F, Ishibashi N, Suzuki S, Sakuma H, Takahashi H, Takeda M, Shirato K, Hosoya M: Changes in virus detection in hospitalized children before and after the severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 pandemic. Influenza Other Respir Viruses 2022 Apr 29. doi: 10.1111/irv.12995. Online ahead of print.（重症急性呼吸器症候群コロナウイルス2型のパンデミック前後の入院小児におけるウイルス検出の変化）
  15. Shirato K*, Kakizaki M, Tomita Y, Kawase M, Takeda M: Detection of the ORF1 gene is an indicator of the possible isolation of severe acute respiratory syndrome coronavirus-2. Pathogens 11:302, 2022.（ORF1遺伝子の検出は、重症急性呼吸器症候群コロナウイルス2型の分離の可能性を示す指標となる）
  16. Takashita E, inoshita N, Yamayoshi S, Sakai-Tagawa Y, Fujisaki S, Ito M, Iwatsuki-Horimoto K, Halfmann P, Watanabe S, Maeda K, Imai M, Mitsuya H, Ohmagari N, Takeda M, Hasegawa H, Kawaoka Y*: Efficacy of antiviral agents against the SARS-CoV-2 Omicron subvariant BA.2. N Engl J Med 386:1475-1477, 2022.（SARSコロナウイルス2型オミクロンBA.2変異株に対する抗ウイルス剤の有効性）Link
  17. Ichimura Y, Yamauchi M, Yoshida N, Miyano S, Komada K, Thandar MM, Tiwara S, Mita T, Hombhanje FW, Mori Y, Takeda M, Hachiya M*. (2022) Effectiveness of immunization activities on measles and rubella immunity among individuals in East Sepik, Papua New Guinea: A cross-sectional study. IJID Regions 3:84-88, 2022.（パプアニューギニア東セペックにおける個人の麻疹・風疹免疫に対する予防接種活動の効果：横断的研究）
  18. Kitai Y, Sato K, Shirato K, Ohmiya S, Watanabe O, Kisu T, Ota R, Takeda M, Kawakami K, Nishimura H*: Variation in thermal stability among respiratory syncytial virus clinical isolates under non-freezing conditions. Viruses 14:679, 2022.（RSウイルス臨床分離株における非凍結条件下での熱安定性のばらつきについて）Link
  19. Kume Y, Hashimoto K*, Shirato K, Norito S, Suwa R, Chishiki M, Ono T, Mashiyama F, Mochizuki I, Sato M, Ishibashi N, Suzuki S, Sakuma H, Takahashi H, Takeda M, Hosoya M: Epidemiological and clinical characteristics of infections with seasonal human coronavirus and respiratory syncytial virus in hospitalized children immediately before the coronavirus disease 2019 pandemic. J Infect Chemother 28:859-865, 2022.（コロナウイルスパンデミック直前の入院小児における季節性ヒトコロナウイルスおよびRSウイルス感染症の疫学的および臨床的特徴）
  20. Kakizaki M, Kume Y, Suwa R, Kawase M, Ono T, Chishiki M, Norito S, Sato M, Sakuma H, Suzuki S, Hosoya M, Takeda M, Hashimoto K, Shirato K*: Thirteen nearly complete genome sequences of human bocavirus 1 isoated from pediatric inpatients in Fukushima, Japan. Microbiol Resour Announc 11:e0102721, 2022.（福島県内の小児科入院患者から採取したヒトボカウイルス1型13株のほぼ完全なゲノム配列）
  21. Takashita E, Kinoshita N, Yamayoshi S, Sakai-Tagawa Y, Fujisaki S, Ito M, Iwatsuki-Horimoto K, Chiba S, Halfmann P, Nagai H, Saito M, Adachi E, Sullivan D, Pekosz A, Watanabe S, Maeda K, Imai M, Yotsuyanagi H, Mitsuya H, Ohmagari N, Takeda M, Hasegawa H, Kawaoka Y*: Efficacy of antibodies and antivirals against COVID-19 omicron variant. N Engl J Med 386:995-998, 2022.（SARSコロナウイルス2型オミクロン変異株に対する抗体医薬品および抗ウイルス剤の有効性）Link
  22. Shirato K*, Matsuyama S, Takeda M: Less frequent sequence mismatches in variants of concern (VOCs) of SARS-CoV-2 in the real–time RT–PCR assays developed by the National Institute of Infectious Diseases, Japan. Jpn J Infect Dis 75:96-101, 2022.（国立感染症研究所が開発したリアルタイムRT-PCR法において、SARSコロナウイルス2型の懸念される変異株（VOC）における配列ミスマッチの頻度は少ない）
  23. Takeda M*: Proteolytic activation of SARS-CoV-2 spike protein. Microbiol Immunol 66:15-23, 2022.（SARSコロナウイルス2型のスパイク蛋白の開裂活性化）Link
  24. 竹田誠*　SARS-CoV-2とヒトコロナウイルスのウイルス学的特徴　小児内科　54:12-17, 2022. Link


2021年

  1. Kato F*, Nakatsu Y, Murano K, Wakata A, Kubota T, Hishiki T, Yamaji T, Kidokoro M, Katoh H, Takeda M. Antiviral activity of CD437 against mumps virus. Front Microbiol 12:751909, 2021.（CD437のムンプスウイルスに対する抗ウイルス活性）Link
  2. Shirato K*, Tomita Y, Katoh H, Yamada S, Fukushi S, Matsuyama S, Takeda M: Performance evaluation of real–time RT–PCR assays for detection of severe acute respiratory syndrome coronavirus–2 developed by the National Institute of Infectious Diseases, Japan. Jpn J Infect Dis 74:465-472,2021.（国立感染症研究所が開発した重症急性呼吸器症候群コロナウイルス2型検出のためのリアルタイムRT-PCR法の性能評価）
  3. Saito M, Tsukagoshi H, Sada M, Sunagawa S, Shirai T, Okayama K, Sugai T, Tsugawa T, Hayashi Y, Ryo A, Takeda M, Kawashima H, Saruki N, Kimura H*. Detailed evolutionary analyses of the F gene in the respiratory syncytial virus subgroup A. Viruses. 13:2525, 2021.（RSウイルスのサブグループAにおけるF遺伝子の詳細な進化的解析）
  4. Okemoto–Nakamura Y, Someya K, Yamaji T, Saito K, Takeda M, Hanada K*. Poliovirus–nonsusceptible Vero cell line for the World Health Organization global action plan. Sci Rep 11:6746, 2021.（世界保健機関グローバル・アクション・プランのためのポリオウイルス非感受性Vero細胞株）Link
  5. Yamamoto Y, Nakano S, Seki F, Shigeta Y, Ito S, Tokiwa H, Takeda M*: Computational analysis reveals a critical point mutation in the N–terminal region of the signaling lymphocytic activation molecule responsible for the cross–species infection with canine distemper virus. Molecules 26:1262, 2021.（犬ジステンパーウイルスの種間伝播の原因となるシグナル伝達リンパ球活性化分子（SLAM）N末端領域の重要な変異が、計算科学解析によって明らかにされた）Link
  6. Tomita Y, Takeda M, Matsuyama S*. (2021) The anti–influenza virus drug favipiravir has little effect on replication of SARS-CoV-2 in cultured cells. Antimicrob Agents Chemother 65:e00020–21, 2021.（抗インフルエンザウイルス薬ファビピラビルは、培養細胞においてSARSコロナウイルス2型の複製にほとんど影響を及ぼさない）Link
  7. Tomita Y, Matsuyama S, Fukuhara H, Maenaka K, Kataoka H, Hashiguchi T, Takeda M*: The physiological TMPRSS2 inhibitor HAI–2 alleviates SARS-CoV-2 infection. J Virol 95:e00434–21, 2021.（生理的TMPRSS2阻害剤HAI-2は SARSコロナウイルス2型の感染を抑える）Link
  8. Shionoya K, Yamasaki M, Iwanami S, Ito Y, Fukushi S, Ohashi H, Saso W, Tanaka T, Aoki S, Kuramochi K, Iwami S, Takahashi Y, Suzuki T, Muramatsu M, Takeda M, Wakita T, Watashi K*: Mefloquine, a potent anti–severe acute respiratory syndrome–related coronavirus 2 (SARS-CoV-2) drug as an entry inhibitor in vitro. Front Microbiol 12:651403, 2021.（重症急性呼吸器症候群関連コロナウイルス2型の抗ウイルス剤候補であるメフロキンのin vitroにおける強力なウイルス侵入阻害活性）
  9. Ohashi H, Watashi K*, Saso W, Shionoya K, Iwanami S, Hirokawa T, Shirai T, Kanaya S, Ito Y, Kim KS, Nomura T, Suzuki T, Nishioka K, Ando S, Ejima K, Koizumi Y, Tanaka T, Aoki S, Kuramochi K, Suzuki T, Hashiguchi T, Maenaka K, Matano T, Muramatsu M, Saijo M, Aihara K, Iwami S, Takeda M, McKeating JA, Wakita T: Potential anti–COVID-19 agents, cepharanthine and nelfinavir, and their usage for combination treatment. iScience 24:102367, 2021.（抗新型コロナウイルス感染症（COVID-19）薬として期待されるセファランチンとネルフィナビルの併用療法としての使用について）
  10. Ohashi H, Wang F, Stappenbeck F, Tsuchimoto K, Kobayashi C, Saso W, Kataoka M, Yamasaki M, Kuramochi K, Muramatsu M, Suzuki T, Sureau C, Takeda M, Wakita T, Parhami F, Watashi K*: Identification of anti–severe acute respiratory syndrome–related coronavirus 2 (SARS-CoV-2) Oxysterol derivatives in vitro. Int J Mol Sci 22:3163, 2021.（オキシステロール誘導体の重症急性呼吸器症候群関連コロナウイルス2型に対するin vitroでの抗ウイルス活性）
  11. Ikegame S, Hashiguchi T, Hung CT, Dobrindt K, Brennand KJ, Takeda M, Lee B*: Fitness selection of hyperfusogenic measles virus F proteins associated with neuropathogenic phenotypes. Proc Natl Acad Sci U S A 118:e2026027118, 2021.（高い膜融合活性を持った麻疹ウイルスFタンパク質の神経病原性に関連した適合性選択）Link
  12. 田原舞乃*, 竹田誠　麻疹ウイルスベクターワクチン　医学のあゆみ　279:1010–1014, 2021 Link
  13. 竹田誠*　SARS-CoV-2のウイルス学　周産期医学　51:319–317, 2021. Link
  14. 竹田誠*　海外における新型コロナワクチンの開発–世界の治験状況と展望　感染と抗菌薬　24:200–206, 2021. Link
  15. 竹田誠*　パンデミック感染症としてのCOVID-19とSARS-CoV-2の特性　病理と臨床　39:1182–1189, 2021. Link
  16. 竹田誠*　新型コロナウイルスSARS-CoV-2の特性、変異ウイルスの出現　JBSA Newsletter　11:42–50, 2021. Link
  17. 加藤大志*　パラミクソウイルスのRNA合成におけるシャペロンタンパク質の役割　生体の科学　72: 344-347, 2021. Link
  18. 加藤大志*　ムンプスウイルス増殖に関わる宿主因子の機能解析　ウイルス　72: 71-78, 2021. Link


2020年

  1. Okamaoto K, Shirato K*, Nao N, Saito S, Kageyama T, Hasegawa H, Suzuki T, Matsuyama S, Takeda M: An assessment of real–time RT–PCR kits for SARS-CoV-2 detection. Jpn J Infect Dis 73:366–368, 2020.（SARSコロナウイルス2型検出のためのリアルタイムRT-PCRキットの評価）
  2. Shirato K*, Nao N, Katano H, Takayama I, Saito S, Kato F, Katho H, Sakata M, Nakatsu Y, Mori Y, Kageyama T, Matsuyama S, Takeda M: Development of genetic diagnositic methods for novel coronavirus 2019 (nCoV–2019) in Japan. Jpn J Infect Dis 73:304–307, 2020.（日本における新型コロナウィルス2019（nCoV-2019）の遺伝子診断法の開発）
  3. Shirato K*, Nao N, Matsuyama S, Takeda M, Kageyama T: An ultra–rapid real–time RT–PCR method using the PCR1100 to detect severe acute respiratory syndrome coronavirus–2. Jpn J Infect Dis 74:29–34, 2020.（PCR1100を用いた超高速リアルタイムRT-PCR法による重症急性呼吸器症候群コロナウイルス2型検出の試み）
  4. Seki F, Ohishi K, Maruyama T, Takeda M*: Phocine distemper virus uses phocine and other animal SLAMs as a receptor but not human SLAM. Microbiol Immunol 64:578–583, 2020.（アザラシジステンパーウイルスは、アザラシなどの動物のSLAMを受容体として利用するが、ヒトのSLAMは利用しない）
  5. Kato F*, Matsuyama S, Kawase M, Hishiki T, Katoh H, Takeda M: Antiviral activities of mycophenolic acid and IMD–0354 against SARS-CoV-2. Microbiol Immunol 64:635–639, 2020.（SARSコロナウイルス2型に対するミコフェノール酸およびIMD-0354の抗ウイルス活性）
  6. Uchino K, Miyoshi T, Mori Y, Komase K, Okayama F, Shibata Y, Yoshida H, Numata T, Takeda M, Tanaka T*: Comparison of virological and serological methods for laboratory confirmation of rubella. J Clin Virol 123:104257, 2020.（風疹の実験室診断のためのウイルス学的方法と血清学的方法の比較）
  7. Nao N*, Saikusa M, Sato K, Sekizuka T, Usuku S, Tanaka N, Nishimura H, Takeda M: Recent molecular evolution of human metapneumovirus (HMPV): Subdivision of HMPV A2b strains. Microorganisms 8:E1280, 2020.（ヒトメタニューモウイルス（HMPV）の最近の分子進化：HMPV A2b株の細分化）
  8. Yamamoto M, Kiso M, Sakai–Tagawa Y, Iwatsuki–Horimoto K, Imai M, Takeda M, Kinoshita N, Ohmagari N, Gohda J, Semba K, Matsuda Z, Kawaguchi Y, Kawaoka Y, Inoue JI*: The anticoagulant nafamostat potently inhibits SARS-CoV-2 S protein–mediated fusion in a cell fusion assay system and viral infection in vitro in a cell–type–dependent manner. Viruses 12:E629, 2020.（抗凝固剤ナファモスタットは、細胞融合アッセイ系におけるSARSコロナウイルス2型Sタンパク質を介した膜融合とin vitroにおけるウイルス感染を細胞種依存的に強力に阻害する）
  9. Yamagishi T*, Ohnishi M, Matsunaga N, Kakimoto K, Kamiya H, Okamoto K, Suzuki M, Gu Y, Sakaguchi M, Tajima T, Takaya S, Ohmagari N, Takeda M, Matsuyama S, Shirato K, Nao N, Hasegawa H, Kageyama T, Takayama I, Saito S, Wada K, Fujita R, Saito H, Okinaka K, Griffith M, Parry AE, Barnetson B, Leonard J, Wakita T: Environmental sampling for severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 during a COVID-19 outbreak on the Diamond Princess cruise ship. J Infect Dis 222:1098–1102, 2020.（クルーズ船ダイアモンドプリンセス号で発生した新型コロナウイルス感染症（COVID-19）アウトブレイクの環境サンプリングによる重症急性呼吸器症候群コロナウイルス2型の検出）
  10. Seki F, Yamamoto Y, Fukuhara H, Ohishi K, Maruyama T, Maenaka K, Tokiwa H, Takeda M*: Measles virus hemagglutinin protein establishes a specific interaction with the extreme N–terminal region of human signaling lymphocytic activation molecule to enhance infection. Front Microbiol 11:1830, 2020.（麻疹ウイルスヘマグルチニンタンパク質は、ヒトのシグナル伝達リンパ球活性化分子（SLAM）の最N末端領域と特異的な相互作用を持つことで感染を促進する）
  11. Imai M, Iwatsuki–Horimoto K, Hatta M, Loeber S, Halfmann PJ, Nakajima N, Watanabe T, Ujie M, Takahashi K, Ito M, Yamada S, Fan S, Chiba S, Kuroda M, Guan L, Takada K, Armbrust T, Balogh A, Furusawa Y, Okuda M, Ueki H, Yasuhara A, Sakai–Tagawa Y, Lopes TJS, Kiso M, Yamayoshi S, Kinoshita N, Ohmagari N, Hattori SI, Takeda M, Mitsuya H, Krammer F, Suzuki T, Kawaoka Y*: Syrian hamsters as a small animal model for SARS-CoV-2 infection and countermeasure development. Proc Natl Acad Sci U S A 117:16587–16595, 2020.（シリアンハムスターは、SARSコロナウイルス2型の感染および対策の開発のための小動物モデルとなる）
  12. Matsuyama S*, Nao N, Shirato K, Kawase M, Saito S, Takayama I, Nagata N, Sekizuka T, Katoh H, Kato F, Sakata M, Tahara M, Kutsuna S, Ohmagari N, Kuroda M, Suzuki T, Kageyama T, Takeda M*: Enhanced isolation of SARS-CoV-2 by TMPRSS2–expressing cells. Proc Natl Acad Sci U S A 117:7001–7003, 2020.（TMPRSS2発現細胞によるSARSコロナウイルス2型の分離の促進）
  13. Hiramoto T, Tahara M, Liao J, Soda Y, Miura Y, Kurita R, Hamana H, Inoue K, Kohara H, Miyamoto S, Hijikata Y, Okano S, Yamaguchi Y, Oda Y, Ichiyanagi K, Toh H, Sasaki H, Kishi H, Ryo A, Muraguchi A, Takeda M*, Tani K*: Non–transmissible MV vector with segmented RNA genome establishes different types of iPSCs from hematopoietic cells. Mol Ther 28:129–141, 2020.（分節型RNAゲノムを持つ非伝播型麻疹ウイルスベクターによる造血系細胞からの異なるタイプのiPS細胞の樹立）
  14. Halfmann PJ, Hatta M, Chiba S, Maemura T, Fan S, Takeda M, Kinoshita N, Hattori SI, Sakai–Tagawa Y, Iwatsuki–Horimoto K, Imai M, Kawaoka Y*. (2020) Transmission of SARS-CoV-2 in domestic cats. N Engl J Med 383:592–594, 2020.（家猫におけるSARSコロナウイルス2型の伝播について）
  15. de Swart RL*, Takeda M*: Editorial overview: Combating measles during a COVID-19 pandemic. Curr Opin Virol Apr;41:iii–vii. DOI: 10.1016/j.coviro.2020.08.008, 2020（新型コロナウイルス感染症（COVID-19）パンデミック時の麻疹対策）
  16. Takeda M*, Seki F, Yamamoto Y, Nao N, Tokiwa H: Animal morbilliviruses and their cross–species transmission potential. Curr Opin Virol 41:38–45, 2020.（動物モルビリウイルスとその異種間伝播の可能性）
  17. 關文緒*, 竹田誠　麻疹　産科と婦人科　87 (suppl):361–364, 2020. Link
  18. 竹田誠*　モルビリウイルスの新たな宿主への適応と進化　臨床とウイルス　48:371–377, 2020. Link
  19. 竹田誠*　新型コロナウイルスの特徴と検出法について　JBSA Newsletter　10:10–14, 2020.  Link
  20. 竹田誠*　新型コロナウイルス感染症（COVID-19）について　up–to–date 子供の感染症　8:4–9, 2020.  Link
  21. 竹田誠*　新型コロナウイルス（SARS-CoV-2）とは　Current Therapy　38:1128–1133, 2020. Link
  22. 竹田誠*　新型コロナウイルスSARS-CoV-2の宿主プロテア–ゼによる開裂活性化　JSPP News Letter 臨時号　16–19, 2020. Link
  23. 竹田誠*　COVID-19の実験室検査診断　インフルエンザ [その他の呼吸器感染症]　21:133–137, 2020. Link
  24. 竹田誠*　新型コロナウイルスSARS-CoV-2のウイルス学的特徴　公衆衛生情報　50:6–7, 2020
  25. 田原舞乃*, 竹田誠　光制御性ウイルスベクタ–　ウイルスベクタ–の遺伝子発現や増殖を自由自在に操れる世界初の技術　感染炎症免疫　50:144–145, 2020
  26. 竹田誠*　急性呼吸器感染症ウイルスの病原性発現ならびに制御に関する研究　モダンメディア　66:4–10, 2020. Link


2019年

  1. Okabayashi H, Komada K, Kidokoro M, Kitamura T, Miyano S, Ito T, Phounphenghak K, Pathammavong C, Murano K, Nagai M, Mori Y, Komase K, Xeuatvongsa A, Takeda M, Hachiya M*: Seroprevalence of mumps before the introduction of mumps–containig vaccine in Lao PDR: Results from a nationwide cross–sectional population–based survey. BMC Res Notes 12:155, 2019.（ラオスにおけるムンプスワクチン導入前のムンプスの有病率：全国横断人口調査結果より）
  2. Saikusa M*, Nao N, Kawakami C, Usuku S, Tanaka N, Tahara M, Takeda M, Okubo I: Predominant detection of the subgroup A2b human metapneumovirus strain with 111–nucleotide duplication in Yokohama City, Japan in 2018. Jpn J Infect Dis 72:350–352, 2019.（111塩基重複を有するサブグループA2b株が、2018年の横浜市におけるヒトメタニューモウイルスの主要な検出株である）
  3. Nao N, Sato K, Yamagishi Y, Tahara M, Nakatsu Y, Seki F, Katoh H, Ohnuma A, Shirogane Y, Hayashi M, Suzuki T, Kikuta H, Nishimura H, Takeda M*: Consensus and variations in cell line specificity among human metapneumovirus strains. PLOS ONE 14:e0215822, 2019.（ヒトメタニューモウイルス株における細胞株特異性の共通性と違い）
  4. Vynnycky E*, Miyano S, Komase K, Mori Y, Takeda M, Kitamura T, Xeuatvongsa A, Hachiya M: Estimating the immunogenicity of measles–rubella vaccination administered during a mass campaign in Lao People's Democratic Republic using multi–valent seroprevalence data. Sci Rep 9:12545, 2019.（ラオス人民民主共和国のマスキャンペーンで実施された麻疹・風疹ワクチン接種の多価血清有病率データを用いた免疫原性の推定）
  5. Fukuhara H, Ito Y, Sako M, Yoshida K, Seki F, Hashiguchi T, Higashibata M, Ose T, Kuroki K, Takeda M, Maenaka K*: Specificity of morbillivirus hemagglutinins to recognize SLAM of different species. Viruses 11:E761, 2019.（モルビリウイルスのヘマグルチニンが異なる種のSLAMを認識する特異性について）
  6. Iwata–Yoshikawa N, Okamura T, Shimizu Y, Kotani O, Sato H, Sekimukai H, Fukushi S, Suzuki T, Sato Y, Takeda M, Tashiro M, Hasegawa H, Nagata N*: Acute respiratory infection in human dipeptidyl peptidase 4–transgenic mice Infected with Middle East respiratory syndrome coronavirus. J Virol 93:e01818–18, 2019.（ヒトジペプチジルペプチダーゼ4トランスジェニックマウスにおける中東呼吸器症候群コロナウイルスによる急性呼吸器感染について）
  7. Iwata–Yoshikawa N, Okamura T, Shimizu Y, Hasegawa H, Takeda M, Nagata N*: TMPRSS2 contributes to virus spread and immunopathology in the airways of murine models after coronavirus infection. J Virol 93:e01815–18, 2019.（TMPRSS2は、マウスモデルにおいてコロナウイルス感染後の気道におけるウイルスの拡がりと免疫病理に関係している）
  8. Sakata M*, Katoh H, Otsuki N, Okamoto K, Nakatsu Y, Lim CK, Saijo M, Takeda M, Mori Y: Heat shock protein 90 ensures the integrity of rubella virus p150 protein and supports viral replication. J Virol 93:e01142–19, 2019.（熱ショックタンパク質90は、風疹ウイルスのp150タンパク質の完全性を担保することで、ウイルスの複製をサポートする）
  9. Seki F, Miyoshi M, Ikeda T, Nishijima H, Saikusa M, Itamochi M, Minagawa H, Kurata T, Ootomo R, Kajiwara J, Kato T, Komase K, Tanaka–Taya K, Sunagawa T, Oishi K, Okabe N, Kimura H, Suga S, Kozawa K, Otsuki N, Mori Y, Shirabe K*, Takeda M*, Measles Surveillance Group in Japan, Technical Support Team for Measles Control in Japan: Nationwide molecular epidemiology of measles virus in Japan between 2008 and 2017. Front Microbiol 10:1470, 2019.（2008年から2017年までの日本における麻疹ウイルスの全国規模の分子疫学）
  10. Kimura H*, Shirabe K, Takeda M, Kobayashi M, Tsukagoshi H, Okayama K, Ryo A, Nagasawa K, Okabe N, Minagawa H, Kozawa K: The association between documentation of Koplik spots and laboratory diagnosis of measles and other rash diseases in a national measles surveillance program in Japan. Front Microbiol 10:269, 2019.（麻疹サーベイランス事業におけるコプリック斑の記録と麻疹およびその他の発疹疾患の臨床検査診断との関連性）
  11. Tadokoro T, Jahan ML, Ito Y, Tahara M, Chen S, Imai A, Sugimura N, Yoshida K, Saito M, Ose T, Hashiguchi T, Takeda M, Fukuhara H, Maenaka K*: Biophysical characterization and single–chain Fv construction of a neutralizing antibody to measles virus. FEBS J 287:145–159, 2019.（麻疹ウイルス中和抗体の生物物理学的特性と一本鎖Fvの構築）
  12. Katoh H*, Sekizuka T, Nakatsu Y, Nakagawa R, Nao N, Sakata M, Kato F, Kuroda M, Kidokoro M, Takeda M: The R2TP complex regulates paramyxovirus RNA synthesis. PLOS Pathog 15:e1007749, 2019.（R2TP複合体はパラミクソウイルスのRNA合成を制御している）
  13. Tahara M, Takishima Y, Miyamoto S, Nakatsu Y, Someya K, Sato M, Tani K, Takeda M*: Photocontrollable mononegaviruses. Proc Natl Acad Sci USA 116:11587–9, 2019.（光制御型モノネガウイルス）
  14. Brown KE*, Rota PA, Goodson JL, Williams D, Abernathy, Takeda M, Mulders MN: Genetic characterization of measles and rubella viruses detected through global measles and rubella elimination surveillance, 2016–2018. MMWR 68:587–591, 2019.（世界の麻疹・風疹排除サーベイランスで検出された麻疹・風疹ウイルスの遺伝子解析（2016年～2018年））
  15. Ohishi K*, Maruyama T, Seki F, Takeda M: Marine Morbilliviruses: The diversity and interaction with receptors. Viruses 11:606, 2019.（海のモルビルウイルス：多様性と受容体との相互作用）
  16. 竹田誠*　麻疹, 風疹の最近の流行と予防　バムサジャ–ナル　31:14–18, 2019


2018年以前の主要論文

  1. Otsuki N, Sakata M, Saito K, Okamoto K, Mori Y, Hanada K*, Takeda M*: Both sphingomyelin and cholesterol in the host cell membrane are essential for rubella virus entry. J Virol 92:e01130–17, 2018.（宿主細胞膜のスフィンゴミエリンとコレステロールの両方が風疹ウイルスの細胞侵入に必要である）
  2. Saikusa M*, Kawakami C, Nao N, Takeda M, Usuku S, Sasao T, Nishimoto K, Toyozawa T: 180–nucleotide duplication in the G gene of human metapneumovirus A2b subgroup strains circulating in Yokohama city, Japan, since 2014. Front Microbiol 8:402, 2017.（2014年以降に横浜市で流行しているヒトメタニューモウイルスA2bサブグループ株のG遺伝子には180塩基の重複がある）
  3. Mori Y*, Miyoshi M, Kikuchi M, Sekine M, Umezawa M, Saikusa M, Matsushima Y, Itamochi M, Yasui Y, Kanbayashi D, Miyoshi T, Akiyoshi K, Tatsumi C, Zaitsu S, Kadoguchi M, Otsuki N, Okamoto K, Sakata M, Komase K, Takeda M: Molecular epidemiology of rubella virus strains detected around the time of the 2012–2013 epidemic in Japan. Front Microbiol 8:1513, 2017.（2012-2013年の日本での流行時期に検出された風疹ウイルス株の分子疫学）
  4. Katoh H*, Kubota T, Nakatsu Y, Tahara M, Kidokoro M, Takeda M: Heat shock protein 90 ensures efficient mumps virus replication by assisting with viral polymerase complex formation. J Virol 91:e02220–16, 2017.（熱ショックタンパク質90は、ウイルスポリメラーゼ複合体の形成を補助することにより、ムンプスウイルスの効率的な複製を可能にする）
  5. Rota P*, Moss WJ, Takeda M, de Swart RL, Thompson KM, Goodson JL: Measles. Nat Rev Dis Primers 2:16049, 2016.（麻疹）
  6. Mulders MN, Rota PA, Icenogle JP, Brown KE, Takeda M, Rey GJ, Mamou MCB, Dosseh ARGA, Byabamazima CR, Ahmed HJ, Pattamadilok S, Zhang Y, Gacic–Dobo M, Strebel PM, Goodson JL*: Global measles and rubella laboratory network support for elimination goals, 2010–2015. MMWR 65:438–42, 2016.（排除目標に向けての世界の麻疹・風疹実験室ネットワークの支援、2010-2015年）
  7. Katoh H, Kubota T, Ihara T, Maeda K, Takeda M*, Kidokoro M: Cross–neutralization between human and African bat mumps viruses. Emerg Infect Dis 22:703–706, 2016.（アフリカコウモリ由来のムンプスウイルスとヒトのムンプスウイルスとの交差中和）
  8. Yamaoka Y, Matsuyama S, Fukushi S, Matsunaga S, Matsushima Y, Kuroyama H, Kimura H, Takeda M, Chimuro T, Ryo A*: Development of monoclonal antibody and diagnostic test for Middle East respiratory syndrome coronavirus using cell–free synthesized nucleocapsid antigen. Front Microbiol 7:509, 2016.（無細胞合成ヌクレオキャプシド抗原を用いた中東呼吸器症候群コロナウイルスに対するモノクローナル抗体および診断薬の開発）
  9. Yamamoto M, Matsuyama S, Li X, Takeda M, Kawaguchi Y, Inoue J*, Matsuda Z*: Identification of nafamostat as a potent inhibitor of Middle East respiratory syndrome (MERS) corona virus S–mediated membrane fusion using the split protein–based cell–cell fusion assay. Antimicrob Agents Chemother 60:6532–6539, 2016.（スプリットプロテインを用いた細胞-細胞融合アッセイによる中東呼吸器症候群（MERS）コロナウイルスSを介した膜融合の強力な阻害剤ナファモスタットの同定）
  10. Esumi M*, Ishibashi M, Yamaguchi H, Nakajima S, Tai Y, Kikuta S, Sugitani M, Takeyama T, Tahara M, Takeda M, Wakita T: Transmembrane serine protease TMPRSS2 activates hepatitis C virus infection. Hepatology 61:437–446, 2015.（膜貫通型セリンプロテアーゼTMPRSS2はC型肝炎ウイルス感染を活性化する）
  11. Katoh H*, Kubota T, Kita S, Nakatsu Y, Aoki N, Mori Y, Maenaka K, Takeda M, Kidokoro M: Heat shock protein 70 regulates degradation of the mumps virus phosphoprotein via the ubiquitin–proteasome pathway. J Virol 89:3188–3199, 2015.（熱ショックタンパク質70は、ユビキチン-プロテアソーム経路を介したムンプスウイルスPタンパク質の分解を制御している）
  12. Sakai K*, Sekizuka T, Ami Y, Nakajima N, Kitazawa M, Sato Y, Nakajima K, Anraku M, Kubota T, Komase K, Takehara K, Hasegawa H, Odagiri T, Tashiro M, Kuroda M, Takeda M: A mutant H3N2 influenza virus uses an alternative activation mechanism in TMPRSS2 knockout mice by loss of an oligosaccharide in the hemagglutinin stalk region. J Virol 89:5154–5158, 2015.（ヘマグルチニン・ストーク領域の糖鎖を欠損させた変異型H3N2インフルエンザウイルスが、TMPRSS2ノックアウトマウスに感染する際には、TMPRSS2以外の別の活性化機構を利用していることがわかった）
  13. Katoh H*, Nakatsu Y, Kubota T, Sakata M, Takeda M, Kidokoro M: Mumps virus is released from the apical surface of polarized epithelial cells and the release is facilitated by a Rab11–mediated transport system. J Virol 89:12026–12034, 2015.（ムンプスウイルスは極性上皮細胞の頂端膜側表面から放出され、その放出はRab11を介した輸送系によって促進される）
  14. Sakai K, Ami Y, Tahara M, Kubota T, Anraku M, Abe M, Nakajima N, Sekizuka T, Shirato K, Suzaki Y, Ainai A, Nakatsu Y, Kanou K, Nakamura K, Suzuki T, Komase K, Nobusawa E, Maenaka K, Kuroda M, Hasegawa H, Kawaoka Y, Tashiro M, Takeda M*: The host protease TMPRSS2 plays a major role in in vivo replication of emerging H7N9 and seasonal influenza viruses. J Virol 88:5608–5616, 2014.（宿主プロテアーゼTMPRSS2は、新興H7N9および季節性インフルエンザウイルスの生体内での増殖に大きな役割を果たす）
  15. Sakata M, Otsuki N, Okamoto K, Anraku M, Nagai M, Takeda M, Mori Y*: Short self–interacting N–terminal region of rubella virus capsid protein is essential for cooperative actions of capsid and nonstructural p150 proteins. J Virol 88:11187–11198, 2014.（風疹ウイルスカプシドタンパク質の短いN末端領域は、キャプシドと非構造タンパク質p150の協同作用に不可欠である）
  16. Taya K, Satoh H, Arai S, Yamagishi T, Tahata Y, Nakashima K, Sugawara T, Ohkusa Y, Matsui T, Saito T, Kanou K, Shimada T, Kinoshita H, Yamashita K, Yasui Y, Tada Y, Mori Y, Takeda M, Sunagawa T, Oishi K, Strebel P, Schluter WW, Kamiya H, Reef SE*, Chu SY, Martin R: Nationwide rubella epidemic – Japan, 2013. MMWR 62:457–462, 2013.（全国的な風疹の流行 - 日本、2013年）
  17. Takaki H*, Takeda M, Tahara M, Shingai M, Oshium H, Matsumoto N, Seya T*: MyD88 pathway in plasmacytoid and CD4+ dendritic cells primarily triggers type I interferon production against measles virus in a mouse infection model. J Immunol 191:4740–4747, 2013.（マウス感染モデルにおいて、形質細胞およびCD4+樹状細胞のMyD88経路は、麻疹ウイルスに対するI型インターフェロン産生を主に誘発する）
  18. Tahara M*, Ito Y, Brindley M, Ma X, He J, Xu S, Fukuhara H, Sakai K, Komase K, Rota P, Plemper R, Maenaka K, Takeda M: Functional and structural characterization of neutralizing epitopes of measles virus hemagglutinin protein. J Virol 87:666–675, 2013.（麻疹ウイルスヘマグルチニンタンパク質の中和エピトープの機能的および構造的特性評価）
  19. Sakai K, Nagata N, Ami Y, Seki F, Suzaki Y, Iwata–Yoshikawa N, Suzuki T, Fukushi S, Mizutani T, Yoshikawa T, Otsuki N, Kurane I, Komase K, Yamaguchi R, Hasegawa H, Saijo M, Takeda M, Morikawa S*: Lethal canine distemper virus outbreak in cynomolgus monkeys in Japan in 2008. J Virol 87:1105–1114, 2013.（2008年に日本で発生したカニクイザルの致死的な犬ジステンパーウイルス感染症）
  20. Tahara M*, Ohno S, Sakai K, Ito Y, Fukuhara H, Komase K, Brindley MA, Rota PA, Plemper RK, Maenaka K, Takeda M: The receptor–binding site of the measles virus hemagglutinin protein itself constitutes a conserved neutralizing epitope. J Virol 87:3583–3586, 2013.（麻疹ウイルスのヘマグルチニンタンパク質の受容体結合部位そのものが、保存された中和エピトープを構成している）
  21. Nakatsu Y*, Ma X, Seki F, Suzuki T, Iwasaki M, Yanagi Y, Komase K, Takeda M: Intracellular transport of the measles virus RNP complex is mediated by Rab11A–positive recycling endosomes and drives virus release from the apical membrane of polarized epithelial cells. J Virol 87:4683–4693, 2013.（麻疹ウイルスRNP複合体の細胞内輸送は、Rab11A陽性のリサイクリングエンドソームを介し、極性上皮細胞の頂端膜側からのウイルス放出を促進する）
  22. Sakai K, Yoshikawa T, Seki F, Fukushi S, Tahara M, Nagata N, Ami Y, Mizutani T, Kurane I, Yamaguchi R, Hasegawa H, Saijo M, Komase K, Morikawa S*, Takeda M*: Canine distemper virus associated with a lethal outbreak in monkeys readily adapts to use human receptors. J Virol 87:7170–7175, 2013.（サルでの致死的流行を起こしたイヌジステンパーウイルスは、ヒトの受容体を利用できるように容易に適応する）
  23. Ito M, Iwasaki M, Takeda M, Nakamura T, Yanagi Y*, Ohno S*: Measles virus non–structural C protein modulates viral RNA polymerase activity by interacting with a host protein SHCBP1. J Virol 87:9633–9642, 2013.（麻疹ウイルス非構造Cタンパク質は、宿主タンパク質SHCBP1との相互作用により、ウイルスRNAポリメラーゼ活性を調節する）
  24. Abe M, Tahara M. Sakai K, Yamaguchi H, Kanou K, Shirato K, Kawase M, Noda M, Kimura H, Matsuyama S, Fukuhara H, Mizita K, Maenaka K, Ami Y, Esumi M, Kato A, Takeda M*: TMPRSS2 is an activating protease for respiratory parainfluenza viruses. J Virol 87:11930–11935, 2013.（TMPRSS2 は呼吸器系パラインフルエンザウイルスの活性化プロテアーゼである）
  25. Krumm SA, Takeda M, Plemper RK*: The measles virus nucleocapsid protein tail domain is dispensable for viral polymerase recruitment and activity. J Biol Chem 288:29943–29953, 2013.（麻疹ウイルスのヌクレオキャプシドタンパク質の尾部領域は、ウイルスポリメラーゼのリクルートと活性に必要ない）
  26. Brindley MA, Takeda M, Plattet P, Plemper R*: Triggering the measles virus membrane fusion machinery. Proc Natl Acad Sci USA 109:E3018–3027, 2012.（麻疹ウイルス膜融合装置のトリガー）
  27. Mitsuki YY, Terahara K, Shibusawa K, Yamamoto T, Tsuchiya T, Mizukoshi F, Ishige M, Okada S, Kobayashi K, Morikawa Y, Nakayama T, Takeda M, Yanagi Y, Tsunetsugu–Yokota Y*: HIV–1 infection ex vivo accelerates measles virus infection by upregulating signaling lymphocytic activation molecule (SLAM) in CD4+ T cells. J Virol 86:7227–7234, 2012.（HIV-1の生体外感染は、CD4+T細胞におけるシグナル伝達リンパ球活性化分子（SLAM）の発現を上昇させることにより麻疹ウイルスの感染を促進する）
  28. Pratakpiriya W, Seki F, Otsuki N, Sakai K, Fukuhara H, Katamoto H, Hirai T, Maenaka K, Techangamsuwan S, Lan NT, Takeda M, Yamaguchi R*: Nectin4 is an epithelial cell receptor for canine distemper virus and involved in the neurovirulence. J Virol 86:10207–10210, 2012.（Nectin4は犬ジステンパーウイルスの上皮細胞受容体であり、神経病原性に関与している）
  29. Seki F*, Yamada K, Nakatsu Y, Okamura K, Yanagi Y, Nakayama T, Komase K, Takeda M: The SI strain of measles virus derived from an SSPE patient possesses typical genome alterations and unique amino acid changes that modulate receptor specificity and reduce membrane fusion activity. J Virol 85:11871–11882, 2011.（SSPE患者由来の麻疹ウイルスSI株は、典型的なゲノム変化と、受容体特異性を調節したり、膜融合活性を低下させるようなユニークなアミノ酸変化を持っている）
  30. Rota PA*, Brown K, Mankertz A, Santibanez S, Shulga S, Muller CP, Hübschen JM, Siqueira M, Beirnes J, Ahmed H, Triki H, Al–Busaidy S, Dosseh A, Byabamazima C, Smit S, Akoua–Koffi C, Bwogi J, Bukenya H, Wairagkar N, Ramamurty N, Incomserb P, Pattamadilok S, Jee Y, Lim W, Xu W, Komase K, Takeda M, Tran T, Castillo–Solorzano C, Chenoweth P, Brown D, Mulders MN, Bellini WJ, Featherstone D: Global distribution of measles genotypes and measles molecular epidemiology. J Infect Dis 204:S514–S523, 2011.（麻疹の遺伝子型の世界分布と麻疹の分子疫学）
  31. Bankamp B*, Takeda M, Zhang Y, Xu W, Rota PA: Genetic characterization of measles vaccine strains. J Infect Dis 204:S533–S548, 2011.（麻疹ワクチン株の遺伝学的特性評価）
  32. Meng X, Nakamura T, Okazaki T, Inoue H, Takahashi A, Miyamoto S, Sakaguchi G, Eto M, Naito S, Takeda M, Yanagi Y, Tani K*: Enhanced antitumor effects of an engineered measles virus Edmonston strain expressing the wild–type N, P, L genes on human renal cell carcinoma. Mol Ther 18:544–551, 2010.（野生型N、P、L遺伝子を発現する麻疹ウイルスEdmonston株のヒト腎細胞癌に対する抗腫瘍効果の増強）
  33. Ikegame S, Takeda M, Ohno S, Nakatsu Y, Nakanishi Y, Yanagi Y*: RIG–I and MDA5 RNA helicases both contribute to the induction of interferon–alpha/beta in measles virus–infected human cells. J Virol 84:372–379, 2010.（RIG-IとMDA5 RNAヘリカーゼはともに麻疹ウイルス感染ヒト細胞におけるインターフェロンα/βの誘導に寄与していることが明らかになった）
  34. Ayata M*, Takeuchi K, Takeda M, Ohgimoto S, Kato S, Sharma LB, Tanaka M, Kuwamura M, Ishida H, Ogura H: The F gene of the Osaka–2 strain of measles virus derived from a case of subacute sclerosing panencephalitis is a major determinant of neurovirulence. J Virol 84:11189–11199, 2010.（亜急性硬化性全脳炎の症例に由来する麻疹ウイルスOsaka-2株のF遺伝子は，神経病原性の主要な決定因子である）
  35. Matsuyama S*, Nagata N, Shirato, K, Kawase M, Takeda M, Taguchi F: Efficient activation of SARS coronavirus spike protein by the transmembrane protease, TMPRSS2. J Virol 84:12658–12664, 2010.（SARSコロナウイルスのスパイクタンパク質の膜貫通型プロテアーゼTMPRSS2による効率的な活性化について）
  36. Shirogane Y*, Takeda M, Tahara M, Ikegame S, Nakamura T, Yanagi Y: Epithelial–mesenchymal transition abolishes the susceptibility of polarized epithelial cell lines to measles virus. J Biol Chem 27:20882–20890, 2010.（上皮間葉転換は、極性上皮細胞株の麻疹ウイルスに対する感受性を消失させる）
  37. Yasukawa K, Oshiumi H, Takeda M, Ishihara N, Yanagi Y, Seya T, Kawabata S, Koshiba T*: Mitofusin 2 inhibits mitochondrial antiviral signaling. Sci Signal 2:ra47, 2009.（Mitofusin 2はミトコンドリアの抗ウイルス活性に関するシグナル伝達を阻害する）
  38. Chaipan C, Kobasa D, Bertram S, Glowacka I, Steffen I, Tsegaye TS, Takeda M, Bugge TH, Kim S, Park Y, Marzi A, Pöhlmann S*: Proteolytic activation of the 1918 influenza virus hemagglutinin. J Virol 83:3200–3211, 2009.（1918年インフルエンザウイルスのヘマグルチニン蛋白の開裂活性化）
  39. Iwasaki M, Takeda M, Shirogane Y, Nakatsu Y, Nakamura T, Yanagi Y*: The matrix protein of measles virus regulates viral RNA synthesis and assembly by interacting with the nucleocapsid protein. J Virol 83:10374–10383, 2009.（麻疹ウイルスのマトリックスタンパク質は、ヌクレオキャプシドタンパク質と相互作用することにより、ウイルスRNAの合成と粒子形成を制御している）
  40. Nakatsu Y, Takeda M*, Iwasaki M, Yanagi Y: A highly attenuated measles virus vaccine strain encodes a fully functional C protein. J Virol 83:11996–12001, 2009.（高度に弱毒化された麻疹ウイルスワクチン株は、完全に機能するCタンパク質をコードしている）
  41. Yanagi Y*, Takeda M, Ohno S, Hashiguchi T: Measles virus receptors. Curr Top Microbiol Immunol 329:13–30, 2009.（麻疹ウイルスの受容体）
  42. Tahara M, Takeda M*, Shirogane Y, Hashiguchi T, Ohno S, Yanagi Y: Measles virus infects both polarized epithelial and immune cells using distinctive receptor–binding sites on its hemagglutinin. J Virol 82:4630–4637, 2008.（麻疹ウイルスは、ヘマグルチニンの特徴的な受容体結合部位を利用して、極性上皮細胞および免疫細胞の両方に感染する）
  43. Nakatsu Y, Takeda M*, Ohno S, Shirogane Y, Iwasaki M, Yanagi Y: Measles virus circumvents the host interferon response by different actions of the C and V proteins. J Virol 82:8296–8306, 2008.（麻疹ウイルスはCおよびVタンパク質の異なる作用により、宿主のインターフェロン応答を回避する）
  44. Shirogane Y, Takeda M*, Iwasaki M, Ishiguro N, Takeuchi H, Nakatsu Y, Tahara M, Kikuta H, Yanagi Y: Efficient multiplication of human metapneumovirus in Vero cells expressing the transmembrane serine protease TMPRSS2. J Virol 82:8942–8946, 2008.（膜貫通型セリンプロテアーゼTMPRSS2を発現させたVero細胞におけるヒトメタニューモウイルスの効率的な増殖）
  45. Takeda M*, Ohno S, Tahara M, Takeuchi H, Shirogane Y, Ohmura H, Nakamura T, Yanagi Y: Measles virus possessing the polymerase protein genes of the Edmonston vaccine strain exhibit attenuated gene expression and growth in cultured cells and SLAM–knockin mice. J Virol 82:11979–11984, 2008.（Edmonstonワクチン株のポリメラーゼ蛋白質遺伝子をもつ麻疹ウイルスは、培養細胞およびSLAMノックインマウスにおいて、遺伝子の発現および増殖が減弱している）
  46. Takeda M*: Measles virus breaks through epithelial cell barriers to achieve transmission. J Clin Invest 118:2386–2389, 2008.（麻疹ウイルスは上皮細胞のバリアを破って伝播する）
  47. Hashiguchi T, Kajikawa M, Maita N, Takeda M, Kuroki K, Sasaki K, Kohda D, Yanagi Y*, Maenaka K*: Crystal structure of measles virus hemagglutinin provides insight into effective vaccines. Proc Natl Acad Sci U S A 104:19535–19540, 2007.（麻疹ウイルスのヘマグルチニンの結晶構造から、ワクチンの有効性への重要な知見が得られる）
  48. Ohno S*, Ono N, Seki F, Takeda M, Kura S, Tsuzuki T, Yanagi Y: Measles virus infection of SLAM (CD150) knockin mice reproduces tropism and immunosuppression in human infection. J Virol 81:1650–1659, 2007.（SLAM（CD150）ノックインマウスにおける麻疹ウイルス感染は、ヒトへの感染におけるトロピズムと免疫抑制を再現する）
  49. Tahara M, Takeda M*, Seki F, Hashiguchi T, Yanagi Y: Multiple amino acid substitutions in hemagglutinin are necessary for wild–type measles virus to acquire the ability to use receptor CD46 efficiently. J Virol 81:2564–2572, 2007.（野生型麻疹ウイルスが受容体CD46を効率的に利用する能力を獲得するためには、ヘマグルチニンの複数のアミノ酸置換が必要である）
  50. Tahara M, Takeda M*, Yanagi Y: Altered interaction of the matrix protein with the cytoplasmic tail of hemagglutinin modulates measles virus growth by affecting virus assembly and cell–cell fusion. J Virol 81: 6827–6836, 2007.（ヘマグルチニンの細胞質内ドメインとマトリックス蛋白質との相互作用の変化は、ウイルス粒子形成と膜融合活性に影響を与えることによって麻疹ウイルスの増殖を調節している）
  51. Takeda M*, Tahara M, Hashiguchi T, Sato TA, Jinnouchi F, Ueki S, Ohno S, Yanagi Y: A human lung carcinoma cell line supports efficient measles virus growth and syncytium formation via SLAM– and CD46–independent mechanism. J Virol 81:12091–12096, 2007.（ヒト肺がん細胞株は、SLAMおよびCD46非依存的なメカニズムで麻疹ウイルスの効率的な増殖と巨細胞の形成をサポートする）
  52. Takeda M*, Nakatsu Y, Ohno S, Seki F, Tahara M, Hashiguchi T, Yanagi Y: Generation of measles virus having segmented RNA genome. J Virol 80:4242–4248, 2006.（分節化RNAゲノムを持つ麻疹ウイルスの作製）
  53. Nakatsu Y, Takeda M*, Ohno S, Koga R, Yanagi Y: Translational inhibition and increased interferon induction in cells infected with a C protein–deficient measles virus. J Virol 80:11861–11867, 2006.（C蛋白質欠損麻疹ウイルスに感染した細胞におけるタンパク質翻訳阻害とインターフェロン誘導の亢進）
  54. Takeuchi K*, Takeda M, Miyajima N, Ami Y, Nagata N, Suzaki Y, Jamila S, Kadota S, Nagata K: Stringent requirement of the C protein of wild–type measles virus for growth both in vitro and in macaque. J Virol 79:7838–7844, 2005.（野生型麻疹ウイルスのC蛋白質は、ウイルスが培養細胞およびサルで増殖するために非常に重要である）
  55. Chen B, Takeda M, Lamb RA*: Influenza virus hemagglutinin (H3 subtype) requires palmitoylation of its cytoplasmic tail for assembly: M1 proteins of two subtypes differ in their ability to support assembly. J Virol 79:13673–13684, 2005.（インフルエンザウイルスの粒子形成には、ヘマグルチニン蛋白（H3亜型）の細胞質内ドメインのパルミトイル化が必要である：2つの亜型のM1タンパク質は、粒子形成をサポートする能力が異なる）
  56. Takeda M*, Ohno S, Seki F, Nakatsu, Y, Tahara M, Yanagi Y: Long untranslated regions of the measles virus M and F genes control virus replication and cytopathogenicity. J Virol 79:14346–14354, 2005.（麻疹ウイルスMおよびF遺伝子の長い非翻訳領域は、ウイルスの複製と細胞障害性を制御している）
  57. Tahara M, Takeda M*, Yanagi Y: Contribution of matrix and large protein genes of the measles virus Edmonston strain to growth in cultured cells as revealed by recombinant viruses. J Virol 79:15218–15225, 2005.（組換えウイルスによって麻疹ウイルスEdmonston株のマトリックスおよびポリメラーゼタンパク質遺伝子が培養細胞におけるウイルスの増殖に貢献していることが明らかになった）
  58. Takeda M, Leser GP, Russell CJ, Lamb RA*: Influenza virus hemagglutinin concentrates in lipid raft microdomains for efficient viral fusion. Proc Natl Acad Sci USA 100:14610–14617, 2003.（インフルエンザウイルスヘマグルチニンの脂質ラフト微小ドメインへの集積による効率的なウイルス膜融合の実現）
  59. Mould JA, Paterson RG, Takeda M, Ohigashi Y, Venkataraman P, Lamb RA*, Pinto LH: Influenza B virus BM2 protein has ion channel activity that conducts protons across membranes. Dev Cell 5:175–184, 2003.（インフルエンザB型ウイルスBM2タンパク質は、膜を隔ててプロトンを伝導するイオンチャネル活性を持つ）
  60. Takeda M, Pekosz A, Shuck K, Pinto LH, Lamb RA*: Influenza A virus M2 ion channel activity is essential for efficient replication in tissue culture. J Virol 76:1391–1399, 2002.（インフルエンザAウイルスM2イオンチャネル活性は培養細胞での効率的な複製に不可欠である）
  61. Takeuchi K*, Takeda M, Miyajima N, Kobune F, Tanabayashi K, Tashiro M: Recombinant wild–type and Edmonston strain measles viruses bearing heterologous H proteins: Role of H protein in cell fusion and host cell specificity. J Virol 76:4891–4900, 2002.（相互に置き換えたH蛋白質を持つ組換え野生型およびEdmonston株由来麻疹ウイルス：細胞融合におけるH蛋白質の役割と宿主細胞特異性）
  62. Hashimoto K, Ono N, Tatsuo H, Minagawa H, Takeda M, Takeuchi K, Yanagi Y*: SLAM (CD150)–independent measles virus entry as revealed by recombinant virus expressing green fluorescent protein. J Virol 76:6743–6749, 2002.（緑色蛍光タンパク質を発現する組換えウイルスによって明らかにされたSLAM（CD150）非依存的な麻疹ウイルスの細胞侵入）
  63. Lamb RA*, Takeda M: Death by influenza virus protein. Nat Med 7:1286–1288, 2001.（インフルエンザウイルス蛋白による細胞死）
  64. Takeda M, Takeuchi K*, Miyajima N, Kobune F, Ami Y, Nagata N, Suzaki Y, Nagai Y, Tashiro M: Recovery of pathogenic measles virus from cloned cDNA. J Virol 74:6643–6647, 2000.（クローン化されたcDNAからの病原性麻疹ウイルスの回収）
  65. Takeda M, Kato A, Kobune F, Sakata H, Li Y, Shioda T, Sakai Y, Asakawa M, Nagai Y*: Measles virus attenuation associated with transcriptional impediment and a few amino acid changes in the polymerase and accessory proteins. J Virol 72:8690–8696, 1998.（麻疹ウイルスの弱毒化は、転写レベルの低下とポリメラーゼおよびアクセサリタンパク質の少数のアミノ酸変化に関連している）


講演動画等

  1. 竹田誠　模擬講義「コロナウイルスについて」　東大オープンキャンパス2023　2023年8月2日　動画
  2. 竹田誠　新型コロナウイルスSARS-CoV-2の特性、変異ウイルスの出現　第7回バイオセーフティシンポジウム　ウェブ開催　2021年9月16日　動画
  3. 竹田誠　エビデンスから考える新型コロナウイルス　第185回六稜ト–クリレ–　大阪　2020年10月3日　動画
  4. 新型肺炎のウイルス分離、国内初成功　感染研が記者会見　THE PAGE　 2020年1月31日　動画

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